DOI: https://doi.org/10.30978/SU2018-3-57

Вплив перетворень у стінці тонкої кишки при створенні електрозварних анастомозів різного типу на розривну міцність з’єднання

S. S. Podpriatov, S. E. Podpryatov, S. G. Gichka, V. G. Getman, A. V. Makarov, G. S. Marinsky, V. A. Tkachenko, S. V. Tkachenko, O. V. Chernets, D. V. Tarnavsky

Анотація


Мета роботи — вивчити вплив на клінічні розривні властивості електрозварного анастомозу особливостей морфологічних перетворень у стінці тонкої кишки при застосуванні лінійного та багатоточкового методів з’єднання.

Матеріали і методи. На ділянках тонкої кишки діаметром 25 — 26 см в умовах комплексного гострого експерименту на свинях наклали 2 дворядних скобкових анастомози степлером та по 72 електрозварювальних точковим зварюванням (зубчастий пінцет з тиском на вістрі 1,8 Н/мм2) та лінійним циркулярним (тиск 2,1 Н/мм2) за типом «кінець до кінця». Використовували програму електрозварювального апарата «Патонмед» ЕКВЗ­300 (440 кГц). Випробовували анастомози повільним (до 15 мм рт. ст./хв) введенням рідини. Сліпим методом обирали варіант дослідження для кожного типу електрозварного з’єднання: до розриву або до втрати герметичності скобкового анастомозу (24,5 мм рт. ст.). Нерозірвані анастомози спрямовували на гістологічне дослідження.

Результати та обговорення. Всі електрозварні анастомози залишалися герметичними при тиску розпирання 24,5 мм рт. ст. Лінійний розрив спостерігали при тиску (56,6 ± 9,2) мм рт. ст., точковий — при тиску (38,2 ± 4,2) мм рт. ст. Товщина з’єднання лінійного анастомозу становила від 0,1 до 0,16 мм. Морфологічна характеристика анастомозу дещо відрізнялася на сегменті від 1/2 до 1/3 довжини кола, в якому виявили більшу частку щілин та кількість проміжків між з’єднаними коагульованими м’язовими оболонками, хоча загалом суцільність коагуляційних змін по колу зберігалася. Розрив при дослідженні межі міцності відбувався в зазначеному сегменті. Товщина точкового анастомозу хвилеподібно змінювалася від 0,8 до 3,0 — 4,0 мм. У точці зведення зубоподібних електродів відбувалося з’єднання м’язових оболонок, просторова орієнтація клітинних фрагментів і волокон, утворення конгломерату. Перифокально м’язові шари не зливалися, хоча входили до складу коагуляційного конгломерату, який охоплював переважно м’язовий та підслизовий шари. Серозні оболонки були з’єднані. На прикладі багатоточкового електрозварного з’єднання стінок кишки можна оцінити запас міцності, який може мати суцільне електрозварне з’єднання, та характеристику припустимої нерівномірності морфологічних перетворень при забезпеченні клінічно необхідних покажчиків міцності та герметичності.

Висновки. Незважаючи на різну глибину електрозварних перетворень у тканині вздовж кола анастомозу, наявність з’єднання коагульованих м’язових шарів кишки та суцільність коагуляційних змін уздовж лінії анастомозу, які формуються під дією обраних параметрів інструменту та імпульсів, забезпечують статистично значуще вищий, порівняно зі скобковим, розривний тиск для з’єднання. Глибина електрозварних перетворень та безперервна щільність з’єднання коагульованих м’язових і волоконних структур при лінійному типі з’єднання стінок кишки зумовлюють його переважну міцність порівняно з багатоточковим.

 


Ключові слова


анастомоз; кишка; електрозварювання; радіочастота; інструмент; розривний тиск; морфологія

Повний текст:

PDF

Посилання


Donskov AB, Donskov AB, Yesipov VK, Kagan II. Primeneniye mikrokhirurgicheskogo kishechnogo shva v usloviyakh peritonita pri povrezhdenii obodochnoy kishki. Acta Biomedica Scientifica. 2011;4,2:234-236. https://cyberleninka.ru/article/n/primenenie-mikrohirurgicheskogo-kishechnogo-shva-v-usloviyah-peritonita-pri-povrezhdenii-obodochnoy-kishki (Russian). cyberleninka.ru/article/n/primenenie-mikrohirurgicheskogo-kishechnogo-shva-v-usloviyah-peritonita-pri-povrezhdenii-obodochnoy-kishki

Egorov VI, Schastlivtsev IV, Turusov RA, Baranov AO. Mekhanicheskiye narusheniya pod nit’yu kishechnogo shva kak prichina narusheniy mikrotsirkulyatsii v oblasti soustiy. Annaly khirurgii. 2002;3. C. 66-68 (Russian).

Paton BE, Ivanova OM. (Editors). Tkanevaya vysokochastotnaya elektrosvarochnaya khirurgiya (Russian). The live tissue’s high-frequency electric welding surgery. Athlas. Kyiv: Naukova Dumka, 2009:193.

Ballantyne GH. Intestinal suturing. Review of the experimental foundations for traditional doctrines. Dis Colon Rectum. 1983;26 (12):836-843. https://doi.org/10.1007/BF02554767.

Beard JD, Nicholson ML, Sayers RD et al. Intraoperative air testing of colorectal anastomoses: a prospective, randomized trial. Br J Surg. 1990;77 (10):1095-1097. https://doi.org/10.1002/bjs.1800771006.

Bosmans JW.A. M., Jongen AC.H. M., Bouvy ND, Derikx JP.M. Colorectal anastomotic healing: why the biological processes that lead to anastomotic leakage should be revealed prior to conducting intervention studies. BMC Gastroenterology. 2015;15:180. doi: 10.1186/s12876-015-0410-3.

de Hingh IH, de Man BM, Lomme RM et al. Colonic anastomotic strength and matrix metalloproteinase activity in an experimental model of bacterial peritonitis. Br J Surg. 2003;90:981-988. https://doi.org/10.1002/bjs.4146.

Hendriks T, Mastboom WJ. Healing of experimental intestinal anastomoses. Parameters for repair. Review. Dis Colon Rectum. 1990;33 (10):891-901. https://doi.org/10.1007/BF02051930.

Martens MF, Hendriks T. Postoperative changes in collagen synthesis in intestinal anastomoses of the rat: differences between small and large bowel. Gut. 1991;32:1482-1487. DOI: 10.1136/gut.32.12.1482.

Neutzling CB, Lustosa SA.S., Proenca IM et al. Stapled versus handsewn methods for colorectal anastomosis surgery. Cochrane Database Syst Rev. 2012;2 DOI: 10.1002/14651858.CD003144.pub2.

Pasic F, Salkic NN. Predictive score for anastomotic leakage after elective colorectal cancer surgery: a decision making tool for choice of protective measures. Surg Endosc. 2013;27:3877-3882. doi: 10.1007/s00464-013-2997-1.

Shogan BD, Belogortseva N, Luong PM et al. Collagen degradation and MMP9 activation by Enterococcus faecalis contribute to intestinal anastomotic leak. Sci Transl Med. 2015;7. 286ra68-8. doi: 10.1126/scitranslmed.3010658.

Martens MF, Hendriks T. Postoperative changes in collagen synthesis in intestinal anastomoses of the rat: differences between small and large bowel. Gut. 1991;32 : 1482-1487. DOI: 10.1136/gut.32.12.1482




© Хірургія України, 2018
© ТОВ «ВІТ-А-ПОЛ», 2018